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1.2 方法

1.2.1 黃連水提液的制備

稱取干燥黃連 10 g，超微粉碎，加入 200 mL 的超純水，浸泡 2 h，大火煎

至煮沸后文火，保持 30 min，紗布過濾；藥渣加溫水 300 mL，再大火煎至煮沸

后文火煎 30 min，過濾，合并濾液，45℃旋轉蒸發儀濃縮至 500 mL，10000 rpm

離心 15 min，離心取上清，定容至 100 mL，濃縮濃度為 100 mg·mL-1，用 0.22 μm

的除菌器過濾除菌，分裝 4℃冰箱保存。

1.2.2 高效液相色譜檢測黃連品質

（1）色譜條件

色譜柱：Diamonsil C18（150 mm×4·6 mm，5 μm）；以乙腈—0.05 mol·L-1

磷酸二氫鉀溶液（50:50）（每 100 mL 中加十二垸基硫酸鈉 0.4 g，再以磷酸調節

pH 值為 4.0）為流動相；檢測波長為 345 nm；柱溫：30℃；進樣量：10 μL。

（2）標準曲線

分別稱表小檗堿 0.0018 g，黃連堿 0.0037 g，巴馬汀 0.0024 g，鹽酸小堿

0.002 g，置于 100 mL 容量瓶中，用流動相定容，得表小檗堿濃度為 18 μg·mL-1，

黃連堿濃度為 37 μg·mL-1，巴馬汀濃度為 24 μg·mL-1，鹽酸小堿濃度為 20

μg·mL-1 的混合標準品母液。再分別稀釋得到 7 個梯度的系列對照品溶液，進高

效液相色譜儀測定，最后以峰面積為縱坐標，濃度為橫坐標做四種物質的標準曲

線。

（3）供試品溶液制備

水煮法制得黃連生藥濃度為 0.1 g·mL-1 的黃連溶液，再將該溶液在 12000 rpm

轉速下離心 20 min 除去不溶性雜質，之后取上清液 1 mL 于 10 mL 容量瓶用流動

相定容，再次用 12000 rpm 離心 15 min 除去不溶于流動相的雜質，最后用 0.22 μm

有機系濾膜過濾既得供試品溶液。

1.2.3 細菌培養

（1）細菌培養 將菌株置于 TSB 液體培養液中，37℃，130 rpm 恒溫培養振

蕩器中培養，待細菌長至對數生長期時進行試驗。

（2）細菌傳代 將長至對數期的細菌，2000 rpm 離心 3 min，棄上清，用 PBS

洗一次，離心，加入適量新鮮細菌培養液，重懸以適當比例傳代接種到 50 mL

新鮮培養基中，恒溫培養振蕩器中繼續培養。

（3）細菌凍存 將對數生長期的細菌，2000 rpm 離心 3 min，棄上清，用

PBS 洗一次，離心，新鮮的培養液懸浮，加等體積已備好的甘油水溶液，分裝于

1.5 mL 離心管中，標明細菌株種類和凍存日期，置于-20℃冰箱中保存。

（4）細菌復蘇 從-20℃里取出凍存菌種，待其解凍，用接種環挑一環至已15

備好的固體培養基中，四區劃線后放于 37℃，5% CO2 培養箱內培養，待其長出

單菌落，用接種環挑取一個單菌落至新鮮培養基中進行活化。

1.2.4 MIC 的檢測

（1）菌液的準備 將凍存的痢疾桿菌接種于牛肉膏蛋白胨固體培養基進行復

蘇，待其有單菌落長出，接種于已備好的新鮮、無菌胰蛋白胨大豆肉湯（TSB）

培養基中進行活化，待其培養至對數期，用 TSB 液體培養基將痢疾桿菌濃度調

節至 105-106 cfu·mL-1。

（2）樣品準備 配適當體積的固體培養基高壓滅菌后加入一定體積的黃連水

提液，然后半倍稀釋，使其含藥培養基的濃度為 0、1.25、2.5、5、10、20 mg·mL-1，

倒入以備好的無菌平板中，每個平板中 5 mL 為宜，待其冷卻凝固之后，分別接

上以備好的菌懸液 50 μL 用涂菌器涂抹均勻，在 37℃的培養箱下進行培養。

（3）樣品檢測 細菌檢測 24 h 后，觀察平板上菌種的生長情況，以培養基

上無菌生長的低濃度為黃連水提液的最小抑菌濃度。

1.2.5 痢疾桿菌生長曲線

（1）藥物處理 將培養至對數期的痢疾桿菌接種到新鮮培養基中，使培養液

中黃連水提液的終濃度為 2.5 mg·mL-1，5 mg·mL-1，10 mg·mL-1，無菌水為空白

對照組，37℃，130 rpm 搖床培養；

（2）準備樣品 每隔 1 h 取各組樣品 2 mL，連續取 24 h；

（3）檢測樣品 用分光光度計測定在波長為 600 的各組吸光度 OD 值，取 3

次重復實驗的平均值。繪制黃連水提液作用后痢疾桿菌的生長曲線（OD 值為縱

坐標，時間為橫坐標）。

1.2.6 培養液中 DNA、RNA 等大分子物質的測定

（1）藥物處理 將培養至對數期的痢疾桿菌接種到新鮮培養基中，使培養液

中黃連水提液的終濃度為 2.5 mg·mL-1，5mg·mL-1，10mg·mL-1，無菌水為空白對

照組，37℃，130 rpm 搖床培養；

（2）樣品準備 連續 12 h 取各組樣品 2 mL，離心 10 min，4000 rpm，棄沉

淀留上清。

（3）檢測樣品 用紫外分光光度計測定上清液中 DNA、RNA 等大分子物質

的吸光度值，波長 260 nm。以無菌水為對照組，取 3 次重復實驗的平均值。

1.2.7 黃連對痢疾桿菌細胞壁的影響

將培養至對數期的痢疾桿菌加入到含 2.5 mg·mL-1，5 mg·mL-1，10 mg·mL-1

黃連的 TSB 液體培養基中，使培養基含菌體 107 cfu·mL-1，于 37℃、130 rpm 搖

床培養，以無菌作為對照組，分別在 0、2、4、6、8、10 和 12 h 定時取樣 5000 rpm，16

10 min 離心取上清，上清液按照表 1 加入 96 孔板中。

用酶標儀測定 96 孔板中各樣品在 520 nm 時的吸光度，并隨時間延長檢測各

時間點的吸光度變化情況，平行測定 3 次取平均值。按照公式計算 AKP 的含量

（堿性磷酸酶（金氏單位/100 mL）=[（測定孔-空白孔）/（標準空-空白孔）]×

酚標準品濃度（0.02 mg·mL-1）×100 mL）

1.2.8 黃連對痢疾桿菌呼吸代謝系統的影響

（1）黃連處理 將培養至對數期的痢疾桿菌接種到新鮮培養基中，使培養液

中黃連的終濃度為 2.5 mg·mL-1，5 mg·mL-1，10 mg·mL-1，無菌水為空白對照組，

37℃，130 rpm 搖床培養 10 h，每組設置三個平行；

（2）準備樣品 將培養的菌液 5000 rpm 離心 10 min，棄去上清液，

（3）處理樣品 用 0.1 mol·L Tris-HCl（pH7.4）緩沖液洗菌沉淀 2-3 次后，

加入等體積的溶菌溶液，37℃水浴 20 min 后，立即冰浴，再加入 Tris-SDS

（pH=9.0）緩沖液 1 mL，10000 rpm 低溫離心 15 min，取出上清液；

（4）檢測樣品 酶活性的測定按試劑盒說明書操作。蛋白定量方法參照

Bradford 法

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